Род Salmonella содержит более 2400 сероваров, которые заражают многих млекопитающих, птиц и рептилий и в основном выделяются с фекалиями (Quinn и др. 2002). Сальмонеллез распространен у домашних животных, и инфекция может варьироваться от субклинического носительства до острой фатальной септицемии. Salmonella enterica подвида enterica серовар Enteritidis участвует в возникновении заболеваний кишечника и особенно успешен в заражении стай кур, не вызывая видимых заболеваний и быстро распространяясь между птицами.
Шиншилла (Chinchilla laniger) - это грызун, тесно связанный с морской свинкой и дикобразом. Шиншиллы выращиваются как домашние животные или ради получения меха. Существует очень мало сообщений об инфекциях S Enteritidis у шиншилл, и нет данных о заражении Salmonella enterica подвидом enterica serovar Sofia у шиншилл. Watson и Watson (1966) сообщили о вспышке Salmonella enterica подвида enterica serovar Dublin в колонии шиншилл; Mountain (1989) выделили Salmonella enterica подвида arizonae (O-21 г, z) у шиншиллы с сепсисом; Novak и др. (1994) сообщили о вспышке инфекции видов Salmonella Enteritidis и Listeria на нескольких фермах шиншилл; Yamagishi и др. (1997) сообщили о выделении S Enteritidis у домашней шиншиллы, которая умерла от сепсиса.
S Sofia считается низко патогенной и часто изолируется у кур и людей в Австралии (Harrington и др., 1991); Hafez and Jodas (2000) изолировали S Sofia у индюков. В этом коротком сообщении описывается вспышка заболевания, связанного с инфекциями S Enteritidis, на пяти фермах по разведению шиншилл в разных частях Хорватии и с S Sofia на одной из ферм.
На ферме 1 одна шиншилла внезапно умерла 19 марта 2001 года без явных клинических признаков. Труп был передан для осмотра на кафедру патологии и патологической морфологии ветеринарного факультета Загребского университета. Посмертное обследование выявило острое воспаление тонкого кишечника, увеличенную селезенку и очаговый некроз печени. Печень была направлена в отделение микробиологии и инфекционных заболеваний ветеринарного факультета Загребского университета для бактериологического исследования и была инокулирована в чашки с колумбийским агаром, которые затем инкубировались при 37 ° С в течение 24 часов в аэробных условиях. Было восстановлено большое количество непрозрачных колоний среднего размера и без запаха. Идентификация этих колоний проводилась согласно Quinn и др. (1994). Полоса API 20E (bioMerieux) идентифицировала колонии как виды сальмонелл с вероятностью 99,9%.
Таблица 1. Антимикробная восприимчивость 16 изолятов Salmonella к отдельным антимикробным агентам
|
Антимикробные агенты (концентрации)
|
Процент изолятов (интерпритативный стандарт диаметра зоны [мм])
|
|
Резистентный
|
Средний
|
Восприимчивый
|
|
Ампицилин (10 мкг)
|
0 (≤11)
|
0 (12-13)
|
100 (≥14)
|
|
Сульфаметоксазол (23,75 мкг)
|
100 (≤10)
|
0 (11-15)
|
0 (≥16)
|
|
Сульфаметоксазол+
Триметоприм (23,75+1,25 мкг)
|
0 (≤10)
|
0 (11-15)
|
100 (≥16)
|
|
Хлорамфеникол (30 мкг)
|
0 (≤12)
|
0 (13-17)
|
100 (≥18)
|
|
Неомицин (30 мкг)
|
0 (≤12)
|
0 (13-14)
|
100 (≥15)
|
|
Энрофлоксацин (5 мкг)*
|
0 (≤16)
|
0 (17-19)
|
100 (≥20)
|
|
Тетрациклин (30 мкг)
|
18,75 (≤14)
|
0 (15-18)
|
81,25 (≥19)
|
* Национальный комитет по клиническим лабораторным стандартам (1997)
Со 2 по 20 апреля погибли еще семь животных, и семь образцов печени, два селезенки и два тонкого кишечника были отправлены на бактериологическое исследование. Посмертные осмотры всех животных выявили ту же картину, что и у первой шиншиллы: острое воспаление желудка и тонкого кишечника, увеличенная селезенка и очаговый некроз в печени. Пять различных изолятов сальмонелл были получены из пяти образцов печени. Однако сальмонеллы не были выделены из двух образцов печени, а также из двух образцов селезенки и двух - тонкого кишечника.
По просьбе авторов перед лечением антибиотиками остальной части колонии владелец принес 35 образцов фекалий для культивирования видов сальмонелл. Каждый образец культивировали в 10 мл обогащенного тетратионатом бульона, содержащего йод (Waltman 2000), и инкубировали при 37 ° С в течение 72 часов. Затем бульонные культуры высевали на основу из колумбийского агара, агар Макконки, бриллиантово-зеленый и ксилазин-лизин-дезоксихолатный агар. Колонии, соответствующие сальмонелле, были извлечены из шести из 35 исследованных образцов фекалий и были идентифицированы как виды сальмонеллы, о чем сказано выше. Владелец шиншилл лечил оставшихся животных энрофлоксацином по 100 мг / л (Vetoflok; PLIVA) в питьевой воде в течение семи дней. После курса лечения владелец принес 25 образцов фекалий для культивирования сальмонелл. Эти образцы были подвергнуты бактериологическому исследованию, но никакие виды сальмонелл выделены не были.
С использованием специфической антисыворотки, 15 из 16 изолятов, происходящих из пяти ферм, были идентифицированы как S Enteritidis, а один - как S Sofia. Результаты серотипирования были подтверждены Национальным референцным центром по лечению сальмонеллы и шигеллы, (Институт Пастера, Париж, Франция) и Департаментом общественного здравоохранения, (Загреб, Хорватия). После этого все 16 изолятов были протестированы для определения их чувствительности к антимикробным агентам, подходящим для использования у шиншилл. Тест на чувствительность проводился диффузионным дисковым методом Кирби-Бауэра на агаре Мюллера-Хинтона (Walker 2000) на антимикробную восприимчивость к семи противомикробным препаратам: ампициллину (10 мкг), сульфаметоксазолу (23,75 мкг), сульфаметоксазолу и триметоприму (23,75 мкг + 1,25 мкг), хлорамфениколу (30 мкг), неомицину (30 мкг), энрофлоксацину (5 мкг) и тетрациклину (30 мкг). Зону ингибирования вокруг каждого диска измеряли, и измерение сравнивали с диаграммой, которая классифицировала организм как чувствительный, резистентный или имеющий среднюю чувствительность.
Все 16 изолятов были устойчивы к сульфаметоксазолу, а три штамма S Enteritidis показали устойчивость к тетрациклину. Все протестированные штаммы были чувствительны к ампициллину, сульфаметоксазолу плюс триметоприму, хлорамфениколу, неомицину и энрофлоксацину (таблица 1). Устойчивость изолятов к сульфаметоксазолу, возможно, была связана с тем, что этот антимикробный препарат смешивался с кормом животных.
Общая картина уровней резистентности у всех изолятов сальмонеллы, отправленных в отдельную референс-лабораторию, может быть довольно низкой, но это не подходит для оценки серьезности проблемы резистентности. Как и в случае с другими микроорганизмами, проблема устойчивости видов сальмонелл может быть ограничена конкретным географическим регионом, конкретным сероваром или даже одним местом выработки (Helmuth 2000). Существует очень мало сообщений об инфекциях у шиншилл, вызванных видами сальмонелл, в том числе S Enteritidis и S Sofia. Также отсутствуют данные, относящиеся к источнику инфекции для шиншилл, и о возможности передачи инфекции другим видам животных и людям.
Повсеместное распространение видов сальмонелл и их способность заражать или заселять животных, из которых получают продукты питания, означает, что почти любая пища может вызывать инфекцию у людей или животных, особенно пищевые продукты животного происхождения. Большинство групп пищевых продуктов животного происхождения являются примерами носителей инфекции сальмонеллы. Установлено, что рабочий контакт с инфицированными домашними животными также является важным фактором риска в качестве источника инфекции для человека, причем крысы и мыши являются переносчиками (Guard-Petter и др. 1997, Naughton и др. 2001) для других животных, включая домашних птиц. Сохраняющееся значение S. Enteritidis как человеческого патогена имеет тенденцию затмевать другие серовары сальмонеллы (Humphrey 2000).
Использованные источники
GUARD-PETTER, J., HENZLER, D. J., RAHMAN, M. M. & CARLSON, R. W. (1997) On farm monitoring of mouse-invasive Salmonella enterica serovar Enteritidis and a model for its association with the production of contaminated eggs. Applied and Environmental Microbiology 63, 1588-1593
HAFEZ, H. M. & JODAS, S. (2000) Salmonella infections in turkeys. In Salmonella in Domestic Animals. 3rd edn. Eds C. Wray, A. Wray. New York, CABI Publishing. pp 133-134
HARRINGTON, C. S., LANSER, J. A., MANNING, P. A., & MURRAY, C. J. (1991) Epidemiology of Salmonella sofia in Australia. Applied and Environmental Microbiology 57, 223-227
HELMUTH, R. (2000) Antibiotic resistance in Salmonella. In Salmonella in Domestic Animals. 3rd edn. Eds C. Wray, A. Wray. New York, CABI Publishing. pp 89-106
HUMPHREY, T. (2000) Public-health aspects of Salmonella infection. In Salmonella in Domestic Animals. 3rd edn. Eds C. Wray, A. Wray. New York, CABI Publishing. pp 245-263
MOUNTAIN, A. (1989) Salmonella arizona in a chinchilla. Veterinary Record 125, p25
NATIONAL COMMITTEE FOR CLINICAL LABORATORY STANDARDS (1997) Tentative standard M31-T. Performance standards for antimicrobial disk and dilution susceptibility tests for bacteria isolated from animals. Wayne, National Committee for Clinical Laboratory Standards
NAUGHTON, P. J., GRANT, G., SOJKA, M., BARDOCZ, S., THORNS, C. J. & PUSZTAI, A. (200U1) Survival and distribution of cell-free SEF 21 of Salmonella enterica serovar Enteritidis in the stomach and various compartments of the rat gastrointestinal tract in vivo. Journal of MedicalMicrobiology 50, 1049-1054
NOVAK, S., RUTTKAY, D. & SOLAR, J. (1994) Results of screening for bacterial diseases on large-scale chinchilla (Chinchilla laniger) farms. Slovenskc Veterinarsky Casopis 1, 19-21
QUINN, P. J., CARTER, M. E., MARKEY, B. K., & CARTER, G. R. (1994) Enterobacteriaceae. In Clinical Veterinary Microbiology. 1st edn. London, Wolfe Publishing. pp 209-237
QUINN, P. J., MARKEY, B. K., CARTER, M. E., DONNELLY, W. J. & LEONARD, F. C. (2002) Enterobacteriaceae. In Veterinary Microbiology and Microbial Disease. 1st edn. London, Blackwell Science. pp 106-123
WALKER, R. D. (200l) Antimicrobial susceptibility testing and interpretation of results. In Antimicrobial Therapy in Veterinary Medicine. 3rd edn. Eds J. F. Prescott, J. D. Baggot, R. D. Walker. Ames, Iowa State University Press. pp 12-26
WALTMAN, W. D. (2000) Methods for the cultural isolation of Salmonella. In Salmonella in Domestic Animals. 3rd edn. Eds C. Wray, A. Wray. New York, CABI Publishing. pp 355-372
WATSON, W. A., & WATSON, F. I. (1966) An outbreak of Salmonella Dublin infection in chinchillas. Veterinary Record 78, 15-17
YAMAGISHI, S., WATANABE, Y., TOMURA, H., SEKINE, T., MIMURA, M., IIJIMA, Y., & FUJII, M. (1997) Septic infection of a companion chinchilla with Salmonella enteritidis. Journal of the Japanese Veterinary Medical Association 50, 345-348
Авторы: T. Naglic (DVM, PhD), B. Seol (DVM, PhD), M. Bedekovic (Department of Microbiology and Infectious Diseases), Z. Grabarevic (DVM, PhD, Department of Pathology and Morphology, Veterinary Faculty, University of Zagreb, PO Box 190, 10000 Zagreb, Croatia), E. Listes (Veterinary Institute, Poljicka cesta 33, Split, Croatia)
Naglić T, Seol B, Bedeković M, Grabarević Z, Listes E. Outbreak of Salmonella Enteritidis and isolation of Salmonella Sofia in chinchillas (Chinchilla laniger) // Veterinary Record (2003) 152, 719-720